[PDF] GB 17378.6-2007 - 中国标准 英文版
| 标准号码 | 美元 | 购买PDF | 工期 | 标准名称(英文版) |
| GB 17378.6-2007 | 1979 | GB 17378.6-2007 | <=10 | 海洋监测规范 第6部分：生物体分析 |
| 基本信息 | |
|---|---|
| 标准编号 | GB 17378.6-2007 (GB17378.6-2007) |
| 中文名称 | 海洋监测规范 第6部分：生物体分析 |
| 英文名称 | The specification for marine monitoring -- Part 6: Organism analysis |
| 行业 | 国家标准 |
| 中标分类 | A45 |
| 国际标准分类 | 07.060 |
| 字数估计 | 79,783 |
| 发布日期 | 2007-10-18 |
| 实施日期 | 2008-05-01 |
| 旧标准 (被替代) | GB 17378.6-1998 |
| 引用标准 | GB 17378.3; GB 17378.4; GB 17378.5 |
| 标准依据 | 国家标准批准发布公告2007年第12号(总第112号) |
| 发布机构 | 中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局、中国国家标准化管理委员会 |
| 范围 | 本部分规定了贻贝、虾及鱼等海洋生物体中有害物质残留量的测定方法, 并对样品采集、运输、贮存、预处理和测定结果的计算等提出技术要求。本部分适用于大洋、近海和沿海水域的海洋生物污染调查与监测。 |
GB 17378.6-2007: 海洋监测规范 第6部分：生物体分析
GB 17378.6-2007 英文名称: The specification for marine monitoring -- Part 6: Organism analysis
中华人民共和国国家标准
GB １７３７８．６-２００７
代替GB １７３７８．６-１９９８
海洋监测规范
第６部分：生物体分析
中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局
中国国家标准化管理委员会发布
１ 范围
GB １７３７８的本部分规定了贻贝、虾及鱼等海洋生物体中有害物质残留量的测定方法，并对样品采
集、运输、贮存、预处理和测定结果的计算等提出技术要求。
本部分适用于大洋、近海和沿海水域的海洋生物污染调查与监测。
２ 规范性引用文件
下列文件中的条款通过 GB １７３７８的本部分的引用而成为本部分的条款。凡是注日期的引用文
件，其随后所有的修改单（不包括勘误的内容）或修订版均不适用于本部分，然而，鼓励根据本部分达成
协议的各方研究是否可使用这些文件的最新版本。凡是不注日期的引用文件，其最新版本适用于本
部分。
GB １７３７８．３ 海洋监测规范 第３部分：样品采集、贮存与运输
GB １７３７８．４ 海洋监测规范 第４部分：海水分析
GB １７３７８．５ 海洋监测规范 第５部分：沉积物分析
３ 术语和定义
下列术语和定义适用于GB １７３７８的本部分。
４ 一般规定
４．１ 样品的采集与制备
４．１．１ 采样种类
贝类、虾和鱼类。贝类一般采集菲律宾蛤仔、文蛤、四角蛤蜊、紫贻贝、翡翠贻贝、毛蚶、缢蛏、僧帽牡
蛎等。
４．１．２ 试剂
４．１．２．１ 去离子水或等效蒸馏水，其痕量金属含量应低于分析方法的检出限，或用未受沾污的海水。
４．１．２．２ 合成洗涤剂。
４．１．３ 仪器和设备
仪器和设备如下：
---塑料冷冻箱：配有冰袋。用于贻贝贮存和运输时，底部应具有栅板，以免样品浸入水中；
---冰箱；
---低温冰箱；
---塑料板和尺子：用于长度测量；
---塑料刀；
---玻璃或陶瓷碟：制备样品用；
---镊子：塑料制品或其他合适材料的制品；
---高密度聚乙烯袋和塑料容器：供速冻保存样品用，装样前，应用合成洗涤剂清洗，并用蒸馏水
洗净；
---分析天平：感量０．１ｍｇ；
---塑料洗瓶；
---刮刀：供采集样品用；
---塑料桶：容量２０Ｌ～５０Ｌ；
---大号金属刀：无锈斑，供切取鱼组织用；
---匀浆器：不锈钢或其他适宜材料的制品；
---称量瓶：容量５０ｍＬ；
---电热烘箱；
---干燥箱；
---冷冻干燥设备。
４．１．４ 采样与运输
４．１．４．１ 准备工作
用合成洗涤剂（见４．１．２．２）清洗冷冻箱、高密度聚乙烯袋、塑料板及尺、大号金属刀、刮刀，再用蒸
馏水或海水（见４．１．２．１）漂洗干净。
４．１．４．２ 贻贝样品的采集
用清洁刮刀从其附着物上采集贻贝样。
选取足够数量的完好贻贝存于冷冻箱中。若需长途运输（炎热天超过２ｈ），应把贻贝样品盛于塑
料桶中，将现场采集的清洁海水淋洒在贻贝上，样品保持润湿状但不能浸入水中。
若样品处理须在采样２４ｈ后进行，可将贻贝样存于高密度塑料袋中，压出袋内空气，将袋口打结或
热封，将此袋和样品标签一起放入聚乙烯袋中并封口，存于低温冰箱中。
４．１．４．３ 虾与中小型鱼样采集
按要求选取足够数量的完好的生物样，放入干净的聚乙烯袋中，应防止刺破袋子。挤出袋内空气，
将袋口打结或热封，将此袋和样品标签一起放入另一聚乙烯袋中，并封口，低温冷藏。若贮存期不太长
时（热天不超过４８ｈ），可用冰箱或冷冻箱存放样品。
４．１．４．４ 大型鱼样采集
测量并记下鱼样的叉长、体重和性别。
用清洁的金属刀切下至少１００ｇ肌肉组织，厚度至少５ｃｍ，样品处理时，切除沾污或内脏部分。存
于清洁的聚乙烯袋中，挤出空气并封口，将此袋与样品标签一起放入另一聚乙烯袋中，封口，于低温冰箱
中贮存。若保存时间不太长（热天不超过４８ｈ），可用冰箱或冷冻箱贮放样品。
４．１．４．５ 样品的运输
样品采集后，若长途运输，应把样品放入样品箱（或塑料桶）中，对不需封装的样品应将现场清洁海
水淋洒在样品上，保持样品润湿状（不得浸入水中）；若样品处理，应在采样２４ｈ后进行，可将样品放在
聚乙烯袋中，压出袋内空气，将袋口打结。将此袋和样品标签一起放入另一聚乙烯袋（或洁净的广口玻
璃瓶）中，封口、冷冻保存。其他按照GB １７３７８．３规定执行。
４．１．５ 样品预处理
４．１．５．１ 准备工作
必要时将冷冻样品在冰箱（-２℃～４℃）中放置过夜，使部分解冻以便切片。
用合成洗涤剂（见４．１．２．２）清洗塑料刀、碟、镊子、塑料板及尺和称重塑料膜，用蒸馏水或清洁海水
GB １７３７８．６-２００７
（见４．１．２．１）漂洗干净。工作台用洗净的塑料膜罩上。用合成洗涤剂（见４．１．２．２）仔细地洗手，后用蒸
馏水或清洁海水（见４．１．２．１）漂洗干净。
４．１．５．２ 贝类样的制备
用塑料刀或塑料刷除去贝壳外部所有的附着物。
用蒸馏水或清洁海水（见４．１．２．１）漂洗每一个样品个体，让其自然流干，拉出足丝。用天平称个体
全重，并记下重量。
用另一把塑料刀插入足丝伸出口，切断闭合肌，打开贝壳。
用蒸馏水或清洁海水（见４．１．２．１）洗贝壳内的软组织，用塑料刀和镊子取出软组织，让水流尽。
单个体样品：将软组织放入已称重的塑料容器内，再称重，记下鲜重。盖紧，贴上标签。用尺子测量
并记录贝壳长度。
多个体样品：按上述步骤将至少１０个个体的软组织放入已知重量的塑料容器中，称重，记下鲜重。
于匀浆器中匀化样品，将匀浆样放回原塑料容器，再称重，并记录总重量，计算匀浆样重。贴上样品
标签。
各生物个体大小应相近，并在取出生物组织前分别测量其个体长度和总重量。
４．１．５．３ 虾样制备
４．１．５．３．１ 单个体样品
用尺子量虾体长，将虾放在聚乙烯称样膜上，称重，记下长度和鲜重。
用塑料刀将腹部与头胸部及尾部分开，小心将其内脏从腹部取出。腿全部切除。将腹部翻下，用塑
料刀沿腹部外甲边缘切开，用塑料镊子取下内侧外甲并弃去。
用另一把塑料刀松动腹部肌肉，并用镊子取出肌肉。
检查性腺，记录所鉴别的性别。
用镊子将肌肉移入塑料容器中，称重并记录鲜重。盖紧容器，标上号码。将几个容器一起放入同一
塑料袋中，并附样品登记清单，结紧袋口，低温冰箱中保存。
４．１．５．３．２ 多个体样品
按上述方法制备样品，仔细地记录各个体长度、鲜重、腹部肌肉重和性别。每个样品须包括６个以
上性别相同、大小相近的个体肌肉。将样品放入匀浆器中匀化腹部肌肉，转入已知重量的塑料容器中盖
紧，标上号码，称重，记下鲜重和其他数据。
将几个塑料容器放在同一塑料袋中，并附上样品登记清单，结紧袋口，在低温冰箱中保存。
４．１．５．４ 中小型鱼样制备
４．１．５．４．１ 单个体样品
测量鱼的叉长，并于聚乙烯称样膜上称重。鉴定性腺性别，记下叉长和体重。
用蒸馏水或清洁海水（见４．１．２．１）洗涤鱼样，将它放在工作台上，用塑料刀切除胸鳍并切开背鳍附
近自头至尾部的鱼皮。
在鳃附近和尾部，横过鱼体各切一刀；在腹部，鳃和尾部两侧各切一刀。四刀只切在鱼体一侧，且不
得切太深，以免切开内脏，沾污肉片。
用镊子将鱼皮与肉片分离，谨防外表皮沾污肉片。
用另一把塑料刀将肌肉与脊椎分离，并用镊子取下肌肉。将组织盛于塑料容器中，称重并记录
重量。
若一侧的肌肉量不能满足分析用量，取另一侧肌肉补充。
盖紧容器，贴上标签或记号，做好记录，于低温冰箱中保存。
４．１．５．４．２ 多个体样品
仔细记下各个体体长、鲜重、肌肉重。鉴定性别。个体数不应少于６个，且性别应相同，大小相近。
用匀浆器匀化鱼组织，将匀浆样转入已知重量的塑料容器中，盖紧，贴上标签并称重，记下匀浆样重
和其他数据。置于低温冰箱中存放。
４．１．５．５ 大型鱼样制备
若必要，将现场采集的样品放在-２℃～４℃冰箱中过夜，使部分解冻以便于切片。
用蒸馏水或清洁海水（见４．１．２．１）洗涤鱼样。将鱼样置于清洁的工作台上，剔除残存的皮和骨，用
塑料刀切去表层，再用另一把塑料刀重复操作一次，留下不受污染的肌肉组织。将肌肉组织放入塑料容
器中，盖紧，贴上标签，称重，将数据记入记录表，样品存于低温冰箱中。
４．１．５．６ 干样制备
将部分新鲜试样按４．１．６．１或４．１．６．２步骤烘干，计算干湿比，以校正水分含量。干燥后的样品用
玛瑙研钵磨碎，全部过８０目～１００目（１８０μｍ～１５４μｍ）尼龙筛，供痕量元素分析用。
４．１．６ 干重测定
４．１．６．１ 烘干
将称量瓶放入１０５℃烘箱，２ｈ后，取出称量瓶，置于干燥器中冷却３０ｍｉｎ。
盖好瓶盖，用分析天平称重，记下重量。取５ｇ～１０ｇ上述生物制备样于称量瓶中，盖好瓶盖，再称
重（±０．５ｍｇ）并记下重量。
将盛样品的称量瓶半开盖放入１０５℃烘箱中，２４ｈ后取出，置于干燥器中冷却３０ｍｉｎ。盖好瓶盖后
称重并记录所称重量。
重复烘干操作，至前后两次烘干后的重量差小于总重量的０．５％。计算干重和干湿比。
４．１．６．２ 冷冻干燥
对类脂物含量高的生物样品，不能烘干至恒重，则应用冷冻干燥。准确称取１ｇ～２ｇ上述生物制
备样于干净的冷冻干燥的样品容器中，冷冻干燥２４ｈ后称重一次。再次冷冻干燥２４ｈ，再称重。两次
称重的重量差应小于总重量的０．５％。否则，应继续干燥至符合要求。计算干重和干湿比。
４．１．７ 注意事项
本规定执行中应注意如下事项：
---在实验室附近采集贻贝，不存在特殊的运输和贮藏问题。运往实验室时，应使贻贝样通风并用
海水保持润湿。采自潮间带的贻贝，在空气中可生存２４ｈ。运输时不应将贻贝放在水中；
---手洗净之后，不应接触解剖组织，应带上手套；若条件许可，准备工作和样品制备均应在洁净条
件下进行；
---制备多个体样品时，应取性别相同、个体大小相近的生物。取出软组织之前，应分别测量各个
体的体长和重量；
---样品消化前，将盛有样品的容器总重量与贮存时之重量进行比较，可发现贮存期间样品是否
失重；
---不同部位肌肉的痕量金属含量可能存在差别，故实际样品的有关资料应尽可能记录详细；
---用于有机氯农药和石油烃测定的生物样品，样品采集和预处理的设备和试剂作适当的相应改
变，应避免采用塑料器皿和含有卤代烃试剂；
---生物体中总汞及有害有机物的测定，不应用干燥样品，应用湿样测定，结果仍以干样中被测物
的含量来表示。
４．２ 规定和要求
４．２．１ 分析样品的烘干：未注明干燥温度及时间时，均指１０５℃±１℃，干燥２ｈ。
４．２．２ 标准溶液配制中，所有的移液管和容量瓶均应进行检定或容量校正。
４．２．３ 除另有注明外，所用容器的净化均先用硝酸溶液（１＋３）浸泡２ｄ～３ｄ后，再用去离子水仔细淋
洗干净，晾干后备用。
４．２．４ ｐＨ值除注明测量方法外，均可用精密或广泛ｐＨ试纸测量。
４．２．５ 为检查分析结果的质量，应从一批分析样中按表１任意抽取检查样，分别装袋并另编样号，将基
本样与检查样交分析测试人员，按以下要求进行测定：
---抽查样的测项与基本样相同；
---当分析样数量较多时，基本样与检查样可不应安排在同批内进行测试；
---测试所得结果按表２所列双样相对偏差值控制分析质量。当某测项双样检查结果超差率大于
３０％时，此批基本样中该测项应全部重新称样测定；
---若仍出现上述超差情况，分析测试人员应认真检查分析原因（如标准溶液的配制，环境质量，所
用仪器设备有无不正常情况等）后，再进行这批样品（基本样与检查样）的测定；
---当某测项双样检查结果超差率小于３０％时，超差的样品应重新称样进行测定，直至新测定结
果合格为止。按平行双样的均值报出结果；
---每批分析的样品（２０个左右）应插入２个～３个有证标准物质样品（另行编号），以检验有无系
统误差。
４．３ 说明
４．３．１ 各种酸碱的密度（ρ）是指２０℃时的质量除以体积，单位为ｇ／ｍＬ。
４．３．２ 干燥剂在不指明具体名称时，均指变色硅胶。
４．３．３ 所配制的元......