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[PDF] GB 23200.50-2016 - 英文版
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GB 23200.50-2016
英文版
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GB 23200.50-2016
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食品安全国家标准 食品中吡啶类农药残留量的测定液相色谱-质谱/质谱法
有效
基本信息
标准编号
GB 23200.50-2016 (GB23200.50-2016)
中文名称
食品安全国家标准 食品中吡啶类农药残留量的测定液相色谱-质谱/质谱法
英文名称
Food safety national standard -- Determination of Pyridine Pesticide Residues in Food by Liquid Chromatography -- Mass Spectrometry / Mass Spectrometry
行业
国家标准
中标分类
G25
字数估计
16,167
发布日期
2016-12-18
实施日期
2017-06-18
旧标准 (被替代)
SN/T 2561-2010
标准依据
State Health Commission, Ministry of Agriculture, Food and Drug Administration Notice No. 16 of 2016
发布机构
中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会、国家食品药品监督管理总局
GB 23200.50-2016: 食品安全国家标准 食品中吡啶类农药残留量的测定液相色谱-质谱/质谱法 GB 23200.50-2016 英文名称: Food safety national standard -- Determination of Pyridine Pesticide Residues in Food by Liquid Chromatography -- Mass Spectrometry / Mass Spectrometry 中华人民共和国国家标准 GB 代替SN/T 2561-2010 食品安全国家标准 食品中吡啶类农药残留量的测定 液相色谱-质谱/质谱法 1 范围 本标准规定了食品中吡虫啉、啶虫脒、咪唑乙烟酸、氟啶草酮、啶酰菌胺、噻唑烟酸和氟硫草 定等7种吡啶类农药残留量检测的制样和液相色谱-质谱/质谱测定方法。 本标准适用于大米、小麦、土豆、菠菜、柑橘、核桃仁、茶叶、猪肉、鱼肉、猪肝和牛奶中吡 虫啉、啶虫脒、咪唑乙烟酸、氟啶草酮、啶酰菌胺、噻唑烟酸和氟硫草定残留量的 测定和确证,其它食品可参照执行。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于 本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。 GB 2763 食品安全国家标准 食品中农药最大残留限量GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法 3 原理 试样中残留量的农药用氯化钠盐析后乙腈提取,提取液经石墨化炭黑或C18固相萃取小柱净化, 用液相色谱-质谱/质谱仪检测和确证,外标法定量。 4 试剂和材料 除另有规定外,所有试剂均为分析纯,水为符合GB/T 6682中规定的一级水。 4.1 试剂 4.1.1 乙腈(CH3CN):液相色谱级。 4.1.2 甲醇(CH3OH):液相色谱级。 4.1.3 甲苯(C7H8)。 4.1.4 乙酸(CH3COOH)。 4.1.5 氯化钠(NaCl)。 4.1.6 无水硫酸钠(Na2SO4):经 650℃灼烧 4 h,置于干燥器内备用。 4.2 溶液配制 4.2.1 0.1%乙酸溶液:取 1mL乙酸,用水稀释并定容至 1000 mL。 4.2.2 甲醇-水(1+1,V/V):量取 100 mL甲醇,加入 100 mL水,混匀备用。 4.2.3 甲苯-乙腈酸性溶液:量取 100 mL甲苯,加入 300 mL乙腈和 4 mL乙酸,混匀备用。 4.3 标准品 4.3.1 吡虫啉、啶虫脒、咪唑乙烟酸、氟啶草酮、啶酰菌胺、噻唑烟酸和氟硫草定标准物质:纯度 ≥98%,参见附录 A。 4.4 标准溶液配制 4.4.1 标准贮备液:分别准确称取适量的上述标准品,用甲醇配制成 1.0 mg/mL 的标准贮备液,4℃避光下保存。 4.4.2 混合标准中间液的配制:取上述标准贮备液适量,用甲醇配制成 10 g/mL 的混合标准溶液,4℃避光下保存。 4.4.3 标准工作溶液的配制:吸取适量的混合标准中间液,用空白样品基质配制成 适当浓度的标准工作溶液,使用前配制。 4.5 材料 4.5.1 C18固相萃取小柱:500 mg,3 mL或相当者。 4.5.2 石墨化炭黑小柱:500 mg,6 mL或相当者。 5 仪器和设备 5.1 高效液相色谱−质谱/质谱仪:配电喷雾离子源(ESI)。 5.2 分析天平:感量为 0.0001 g和 0.01 g。 5.3 涡旋混匀器。 5.4 离心机(最大转速 10000 r/min)。 5.5 氮气吹干仪。 5.6 旋转蒸发仪。 5.7 固相萃取装置。 5.8 捣碎机。 6 试样制备与保存 6.1 试样制备 在制样的操作过程中,应防止样品受到污染或发生残留物含量的变化。 6.1.1 柑橘、土豆和菠菜 取有代表性样品500 g,切碎后(不可用水洗),用捣碎机将样品加工成浆状。混匀,装入洁净的 盛样容器内,密封并标明标记。 6.1.2 大米、小麦、核桃仁和茶叶 取有代表性样品500 g,用粉碎机粉碎。混匀,装入洁净的盛样容器内,密封并标明标记。 6.1.3 鱼肉、猪肉和猪肝 取有代表性样品500 g,取样品经捣碎机充分捣碎均匀,装入洁净的盛样容器内,密封并标明标记。 注:以上样品取样部位按GB 2763附录A执行。 6.2 试样保存 大米、小麦、核桃仁和茶叶于0℃4℃下保存;柑橘、土豆、菠菜、猪肉、鱼肉、 猪肝和牛奶于-18℃以下冷冻保存。 7 分析步骤 7.1 提取 7.1.1 大米、小麦、核桃仁和茶叶 对于大米、小麦、核桃仁样品,称取2 g试样(精确至0.01 g)。对于茶叶样品,称取1 g试样(精 确至0.01 g)。将称取的试样置于50 mL离心管中,加入5 mL水混匀后浸泡30 min,加入2 g氯化钠和 10 mL乙腈,于旋涡混合器上混合3 min, 5000 r/min离心5 min,将上层清液转移至另一支离心管。 再用5 mL乙腈重复以上提取过程,合并提取液。于40℃下氮吹浓缩至约 2 mL,待净化。 7.1.2 柑橘、牛奶 称取5 g (精确到0.01 g) 样品于50 mL离心管中,加入2 g氯化钠和10 mL乙腈,于旋涡混合器 上混合3 min。5000 r/min离心5 min,将上层清液转移至另一支离心管。再用5 mL乙腈重复以上提 取过程,合并提取液,于40℃下氮吹浓缩至约 2 mL,待净化。 7.1.3 土豆、菠菜、猪肉、鱼肉和猪肝 称取2 g(精确至0.01 g)样品于50 mL离心管中,加入3 mL水、2 g氯化钠和10 mL乙腈,在涡旋 混合器上混匀3 min,于5000 r/min离心5 min,将上层清液转移至另一支离心管。再用5 mL乙腈重 复以上提取过程,合并提取液。于40℃下氮吹浓缩至约 2 mL,待净化。 7.2 净化 7.2.1 大米、小麦、土豆、柑橘、猪肉、鱼肉和牛奶 在C18固相萃取小柱上端装入1 cm高的无水硫酸钠,先用5 mL乙腈预淋洗小柱,弃去淋洗液。然 后将上述所得提取液过柱,并用4 mL乙腈洗脱,控制流速为0.5 mL/min,收集所有流出液。在40℃ 下氮吹浓缩至近干,用1.0 mL甲醇-水溶液溶解残渣,过0.45 μm有机滤膜供液相色谱-质谱/质谱仪测定。 7.2.2 菠菜、猪肝、核桃仁和茶叶 在石墨化炭黑固相萃取小柱上端装入1cm高的无水硫酸钠,先用10 mL甲苯-乙腈酸性溶液预淋洗 小柱,弃去淋洗液。然后加入上述提取液过柱,用25 mL甲苯-乙腈酸性溶液洗脱,控制流速为0.5 mL/min,收集所有流出液。在40℃下水浴旋转浓缩至约1~2mL后,再用氮气流吹至近干。用1.0 mL 甲醇-水溶液溶解残渣,过0.45m有机相微孔滤膜后,供液相色谱-质谱/质谱仪测定。 7.3 测定 7.3.1 液相色谱参考条件 a) 色谱柱:C18 柱,1504.6mm(内径),粒度 5m 或相当者; b) 流动相:梯度洗脱程序见表 1; c) 流速:0.5 mL/min; d) 柱温:30℃; e) 进样量:10 L。 7.3.2 质谱参考条件 a) 离子源:电喷雾离子源; b) 扫描方式:正离子; c) 检测方式:多反应监测(MRM); d) 雾化气、气帘气、辅助加热气、碰撞气均为高纯氮气;使用前应调节各气体流量以使质谱灵 敏度达到检测要求,参考条件见附录 B; e) 喷雾电压、去集簇电压、碰撞能量等参数应优化至最优灵敏度,参考条件见附录 B。 7.3.3 定量测定 根据试样中被测物的含量,选取响应值适宜的的标准工作溶液进行分析。标准工作液和待测样液 中吡啶类农药的响应值均应在仪器线性响应范围内。如果含量超过标准曲线范围,应稀释到合适浓 度后分析。在上述色谱条件下吡啶类农药的参考保留时间分别为吡虫啉(8.5 min)、啶虫脒(9.0 min)、 咪唑乙烟酸(10.3 min)、氟啶草酮(11.4 min)、啶酰菌胺(11.9 min)、噻唑烟酸(12.8 min)和氟硫 草定(14.0 min)。标准溶液的多反应监测色谱图见附录 C 中图 C.1。 7.3.4 定性测定 在相同的实验条件下,样液中被测物的色谱峰保留时间与标准工作液相同,并且在扣除背景后 的样液谱图中,所选择的离子对均出现,各定性离子的相对丰度与标准品离子的对丰度相比,偏差 不超过表 2规定的范围内,则可判断样品......
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