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[PDF] SN/T 5227.10-2019 - 英文版
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状态
SN/T 5227.10-2019
英文版
209
SN/T 5227.10-2019
[PDF]天数 >=3
出口食品中貂源性成分快速检测 重组酶介导链替换核酸扩增法(RAA法)
有效
基本信息
标准编号
SN/T 5227.10-2019 (SN/T5227.10-2019)
中文名称
出口食品中貂源性成分快速检测 重组酶介导链替换核酸扩增法(RAA法)
英文名称
(Rapid detection of mink-derived components in exported foods Recombinase-mediated strand replacement nucleic acid amplification method (RAA method))
行业
商检行业标准 (推荐)
中标分类
C53
国际标准分类
67.050
字数估计
9,960
发布日期
2019
实施日期
2020-07-01
发布机构
海关总署
SN/T 5227.10-2019: 出口食品中貂源性成分快速检测 重组酶介导链替换核酸扩增法(RAA法) SN/T 5227.10-2019 英文名称: (Rapid detection of mink-derived components in exported foods Recombinase-mediated strand replacement nucleic acid amplification method (RAA method)) 中华人民共和国出入境检验检疫行业标准 出口食品中貂源性成分快速检测 重组酶介导链替换核酸扩增法(RAA 法) 中华人民共和国海关总署 发 布 前言 SN/T 5227-2019《出口食品中动物源性成分快速检测 重组酶介导链替换核酸扩增法(RAA 法)》预计分为以下部分: --第 1 部分:出口食品中鸡源性成分快速检测 重组酶介导链替换核酸扩增法(RAA 法); --第 2 部分:出口食品中猪源性成分快速检测 重组酶介导链替换核酸扩增法(RAA 法); --第 3 部分:出口食品中羊源性成分快速检测 重组酶介导链替换核酸扩增法(RAA 法); --第 4 部分:出口食品中鸭源性成分快速检测 重组酶介导链替换核酸扩增法(RAA 法); --第 5 部分:出口食品中牛源性成分快速检测 重组酶介导链替换核酸扩增法(RAA 法); --第 6 部分:出口食品中水牛源性成分快速检测 重组酶介导链替换核酸扩增法(RAA 法); --第 7 部分:出口食品中马源性成分快速检测 重组酶介导链替换核酸扩增法(RAA 法); --第 8 部分:出口食品中驴源性成分快速检测 重组酶介导链替换核酸扩增法(RAA 法); --第 9 部分:出口食品中狐狸源性成分快速检测 重组酶介导链替换核酸扩增法(RAA 法); --第 10 部分:出口食品中貂源性成分快速检测 重组酶介导链替换核酸扩增法(RAA 法); --第 11 部分:出口食品中大鼠源性成分快速检测 重组酶介导链替换核酸扩增法(RAA 法)。 本部分为 SN/T 5227-2019 第 10 部分。 本部分是根据 GB/T 1.1-2009 给出的规则起草。 本部分由中华人民共和国海关总署提出并归口。 本部分起草单位:中华人民共和国郑州海关、中华人民共和国成都海关、中华人民共和国拱北 海关、中华人民共和国合肥海关、中国检验检疫科学研究院、中华人民共和国北京海关、中华人民共 和国大连海关、中华人民共和国厦门海关、杭州众测生物科技有限公司。 本部分主要起草人:苗丽、林华、罗宝正、陈静、宗凯、王娉、汪琳、郑秋月、徐淑菲、孔繁 德、程奇。 出口食品中貂源性成分快速检测 重组酶介导链替换核酸扩增法(RAA 法) 1 范围 SN/T 5227-2019 的本部分规定了出口食品中貂源性成分的 RAA 检测方法。 本部分适用于出口食品中貂源性成分的定性检测。 2 规范性引用文件 本部分所规定方法的最低检出限(LOD)为 0.1 %(W/W)。 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文 件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。 GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法 GB/T 27403-2008 实验室质量控制规范 食品分子生物学检测 3 术语、定义和缩略语 4 方法提要 以提取的 DNA 为模板,采用貂的特异性检测引物和探针进行实时荧光 RAA 扩增,根据实时荧光 RAA 的增幅情况,实现对食品和饲料中貂成分的检测鉴定。 5 试剂和材料 除另有规定外,所有试剂均为分析纯或生化试剂。实验用水符合 GB/T 6682 的要求。所有试剂均 用无 DNA 酶污染的容器分装。 5.1 CTAB 提取缓冲液(pH8.0):10 g/L CTAB,0.7 mol/L NaCl,0.05 mol/L Tris-HCl,0.01 mol/L Na2EDTA。 5.2 酚 : 氯仿 : 异戊醇 =25 : 24 : 1。 5.3 异丙醇。 5.4 70% 乙醇(体积比)。 5.5 TE 缓冲液(pH8.0):10 mmol/L Tris-HCl(pH8.0),1 mmol/L EDTA(pH8.0)。 5.6 缓冲液 A :20 % 聚乙二醇。 5.7 实时荧光 RAA 扩增体系:2.5 mmol/L dNTPs,225 ng/µL SSB,300 ng/µL recA 重组酶蛋白(SC- recA/BS-recA),75 ng/µL Bsu DNA 聚合酶,75 ng/µL Exo 核酸外切酶,250 mmol/L Tricine,12.5 mmol/ L 二硫苏糖醇,250 ng/µL 肌酸激酶。也可以使用等效的商品化的试剂盒代替。 5.8 缓冲液 B :280 mol/L 醋酸镁。 6 仪器设备 6.1 实时荧光 PCR 仪。 6.2 恒温荧光检测仪。 6.3 核酸蛋白分析仪或紫外分光光度计。 6.4 恒温水浴锅。 6.5 离心机:转速大于等于 12 000 r/min。 6.6 微量移液器:量程 0.5 µL~10 µL,10 µL~100 µL,20 µL~200 µL,200 µL~1000 µL。 6.7 研钵及粉碎装置。 6.8 涡旋振荡器。 6.9 离心管:2mL、1.5mL。 7 检测步骤 7.1 DNA 提取 取 0.2 g 粉碎或磨碎的样品至一洁净的 1.5 mL 离心管中(6.9)(若样品含杂质和调味品,可加入 1 mLdd H2O 洗涤两次),加入 600 µL CTAB 提取缓冲液(pH 8.0)(5.1),涡旋振荡混匀后于 70 ℃温 育 15 min,期间颠倒离心管 2~3 次; 12 000 r/min 离心 5 min,取上清液于一新的干净 1.5 mL 离心管中; 加入 500 µL 酚 : 氯仿 : 异戊醇(25 : 24 : 1)(5.2),上下颠倒离心管 2~3 次后涡旋振荡混匀,12 000 r/min 离心 5 min ;转移上层水相至一新的 1.5 mL 离心管中,加入 0.7 倍体积异丙醇(5.3),上下颠倒 离心管 2~3 次,4 ℃静置 30 min,4 ℃下 12 000 r/min 离心 3 min,小心弃去上清液;加入 700 µL 70 % 乙醇(5.4),重悬沉淀,12 000 r/min 离心 1 min,小心弃去上清液;打开管盖,室温挥发干液体, 加入 50 µL~100 µL TE 缓冲液(pH8.0)(5.5)溶解 DNA,-20 ℃保存备用。DNA 提取也可采用等效 DNA 提取试剂盒进行。 7.2 DNA 浓度和纯度的测定 使用核酸蛋白分析仪或紫外分光光度计分别检测 260 nm 和 280 nm 处的吸光值 A260 和 A280。DNA 的浓度按照式(1)计算: 7.3 实时荧光 RAA 扩增 7.3.1 实时荧光 RAA 反应总体系 7.3.2 实时荧光 RAA 反应程序 7.3.2.1 实时荧光 PCR 仪 39 ℃,60 s,1 个循环;39 ℃,30 s,40 个循环,在每次循环时收集荧光。 7.3.2.2 恒温荧光检测仪 39 ℃,1 min ;39 ℃,20 min,第二阶段开始收集荧光。 7.3.3 实验对照 检测过程中分别设阳性对照、阴性对照、空白对照。采用含有貂源成分的样品作为阳性对照样 品,不含貂源成分的样品作为阴性对照样品,以与模板等体积的双蒸水作为空白对照样品。 8 质量控制 8.1 实时荧光 PCR 仪 8.1.1 空白对照:无荧光对数增长,相应的无报告 Ct 值。 8.1.2 阴性对照:无荧光对数增长,相应的无报告 Ct 值。 8.1.3 阳性对照:有荧光对数增长,且荧光通道出现典型的扩增曲线,相应的 Ct 值小于等于 30.0。 8.2 恒温荧光检测仪 8.2.1 空白对照:无荧光对数增长,相应的无报告 T 值(时间)。 8.2.2 阴性对照:无荧光对数增长,相应的无报告 T 值(时间)。 8.2.3 阳性对照:有荧光对数增长,且荧光通道出现典型的扩增曲线,相应的 T 值(时间)小于等于 15 min。 9 结果判断与表述 9.1 结果判定 9.1.1 实时荧光 PCR 仪 9.1.1.1 在符合条款 8.1 的情况下,结果才能判为有效。 9.1.1.2 如 Ct 值小于等于 35.0,则判定被检样品阳性。 9.1.1.3 如 Ct 值大于 35.0 小于 40.0,则重复一次。如再次检测结果仍然是 Ct 值大于 35.0 小于 40.0, 则判定被......
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SN/T 5227.10-2019
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