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GB/T 17999.8-2008 相关标准英文版PDF

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标准号码内文价格美元第2步(购买)交付天数标准名称详情状态
GB/T 17999.8-2008 英文版 139 GB/T 17999.8-2008 [PDF]天数 <=3 SPF鸡 微生物学监测 第8部分:SPF鸡 鸡白痢沙门氏菌检验 GB/T 17999.8-2008 有效
GB/T 17999.8-1999 英文版 199 GB/T 17999.8-1999 [PDF]天数 <=2 SPF鸡 试管凝集试验 GB/T 17999.8-1999 作废
基本信息
标准编号 GB/T 17999.8-2008 (GB/T17999.8-2008)
中文名称 SPF鸡 微生物学监测 第8部分:SPF鸡 鸡白痢沙门氏菌检验
英文名称 SPF chicken -- Microbiological surveillance -- Part 8: Examination of salmonella pullorum for SPF chicken
行业 国家标准 (推荐)
中标分类 B41
国际标准分类 11.220
字数估计 6,690
发布日期 2008-12-31
实施日期 2009-05-01
旧标准 (被替代) GB/T 17999.7-1999
标准依据 国家标准批准发布公告2008年第27号(总第140号)
发布机构 中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局、中国国家标准化管理委员会
范围 GB/T 17999的本部分规定了鸡白痢沙门氏菌检验的技术要求。本部分适用于对SPF鸡进行鸡白痢沙门氏菌的分离和鉴定。用血清平板凝集试验进行鸡白痢沙门氏菌的抗体检测, 结果难以判断时, 可采用本部分进行复检。

GB/T 17999.8-2008 ICS 11.220 B41 中华人民共和国国家标准 GB/T 17999.8-2008 代替GB/T 17999.7-1999 SPF鸡 微生物学监测 第8部分:SPF鸡 鸡白痢沙门氏菌检验 2008-12-31发布 2009-05-01实施 中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局 中国国家标准化管理委员会发布 前言 GB/T 17999《SPF鸡 微生物学监测》分为10个部分: ---第1部分:SPF鸡 微生物学监测总则; ---第2部分:SPF鸡 红细胞凝集抑制试验; ---第3部分:SPF鸡 血清中和试验; ---第4部分:SPF鸡 血清平板凝集试验; ---第5部分:SPF鸡 琼脂扩散试验; ---第6部分:SPF鸡 酶联免疫吸附试验; ---第7部分:SPF鸡 胚敏感试验; ---第8部分:SPF鸡 鸡白痢沙门氏菌检验; ---第9部分:SPF鸡 试管凝集试验; ---第10部分:SPF鸡 间接免疫荧光试验。 本部分为GB/T 17999的第8部分。 本部分修订参照了NY/T 556-2002《鸡传染性喉气管炎诊断技术》和OIE《陆生动物(哺乳动物、 禽鸟和蜜蜂)诊断试验和疫苗手册》(第五版)中的有关规定。 本部分代替GB/T 17999.7-1999《SPF鸡 鸡白痢沙门氏菌检验》。 本部分与GB/T 17999.7-1999相比主要变化如下: ---增加了活禽泄殖腔拭子检测样品; ---增加了沙门氏菌菌体抗原血清学检测方法; ---增加了附录A“革兰氏染色方法及生化试验结果判定”; ---对试验操作程序进行了修订,将细菌镜检程序提前; ---在范围中进一步明确了本部分使用的情况; ---删除了引用标准; ---修订了试验操作程序。 本部分的附录A为规范性附录。 本部分由中华人民共和国农业部提出。 本部分由全国动物防疫标准化技术委员会(SAC/TC181)归口。 本部分起草单位:中国农业科学院哈尔滨兽医研究所、中国动物卫生与流行病学中心、济南斯帕法 斯家禽有限公司。 本部分主要起草人:曲连东、姜骞、韩凌霞、邵卫星、朱果、单忠芳、刘家森、司昌德、郭东春、于海波、 孟庆文。 本部分所代替标准的历次版本发布情况为: ---GB/T 17999.7-1999。 GB/T 17999.8-2008 SPF鸡 微生物学监测 第8部分:SPF鸡 鸡白痢沙门氏菌检验 1 范围 GB/T 17999的本部分规定了鸡白痢沙门氏菌检验的技术要求。 本部分适用于对SPF鸡进行鸡白痢沙门氏菌的分离和鉴定。 用血清平板凝集试验进行鸡白痢沙门氏菌的抗体检测,结果难以判断时,可采用本部分进行复检。 2 原理 取待检样品(肠内容物、有关脏器匀浆、活禽泄殖腔拭子)接种于增菌培养基中进行增菌,然后将培 养物转移到选择、鉴别培养基上培养,挑选可疑菌落接种于营养琼脂培养基上,取培养物进行生化试验 与血清学试验,以确定鸡白痢沙门氏菌。 3 试剂和器材 3.1 材料 3.1.1 培养基 营养肉汤培养基、DHL琼脂、SS琼脂、亚硫酸铋琼脂(BS)、三糖铁培养基(TSI)、营养琼脂、半固体 琼脂。 3.1.2 生化反应试剂 糖发酵培养基、蛋白胨水、硝酸盐培养基、氧化酶试剂、氨基酸脱羧酶试验培养基、尿素培养基(结果 判定见附录A)。 3.1.3 沙门氏菌诊断血清 A-F多价O血清、O9因子血清、O12因子血清、H-a因子血清、H-d因子血清、H-g.m因子血清和 H-g.p因子血清。 3.2 器材 37℃恒温培养箱。 4 操作步骤 4.1 采样 无菌采取卵巢、肝、脾以及小肠和盲肠,活禽泄殖腔拭子。 4.2 分离培养 将采集样品放入灭菌乳钵或均浆器中研磨成匀浆,加入少量营养肉汤稀释。取培养物或活禽泄殖 腔拭子分别在SS或BS和DHL琼脂平板培养基上划线接种,置(36±1)℃培养24h~48h。在DHL 培养基上若出现黄褐色透明小菌落;或在SS琼脂平板上出现无色半透明圆形小菌落;或在BS琼脂平 板上出现黑色或黑绿色小菌落,则为可疑菌落。如果经24h~48h培养后未发现可疑菌落,再取增菌 培养物重......

英文网页English: GB/T 17999.8-2008

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