路径: 主页 > GB/T > 第627页 > GB/T 16551-2020 | 标准编号 | GB/T 16551-2020 (GB/T16551-2020) | | 中文名称 | 猪瘟诊断技术 | | 英文名称 | Diagnostic techniques for classical swine fever | | 行业 | 国家标准 (推荐) | | 中标分类 | B41 | | 国际标准分类 | 11.220 | | 字数估计 | 20,299 | | 发布日期 | 2020-12-14 | | 实施日期 | 2020-12-14 | | 旧标准 (被替代) | GB/T 16551-2008 | | 引用标准 | GB 19489; GB/T 27540; GB/T 34729-2017; GB/T 35906; GB/T 36875; NY/T 541 | | 标准依据 | 国家标准公告2020年第28号 | | 发布机构 | 国家市场监督管理总局、中国国家标准化管理委员会 | | 范围 | 本标准规定了猪瘟的临床症状与病理变化，样本的采集、保存、运输和处理，实验室病原学诊断方法以及实验室抗体检测方法等。本标准适用于猪(家猪、野猪)的猪瘟诊断。 | GB/T 16551-2020
(Swine fever diagnosis technology)
ICS 11.220
B41
中华人民共和国国家标准
代替GB/T 16551-2008
猪 瘟 诊 断 技 术
2020-12-14发布
2020-12-14实施
国 家 市 场 监 督 管 理 总 局
国 家 标 准 化 管 理 委 员 会 发 布
目次
前言 Ⅲ
引言 Ⅳ
1 范围 1
2 规范性引用文件 1
3 缩略语 1
4 临床症状与病理变化 2
4.1 临床症状 2
4.2 病理变化 2
4.3 结果判定 2
5 样本的采集、保存、运输和处理 2
5.1 器材 2
5.2 试剂 2
5.3 样品采集 3
5.4 保存与运输 3
5.5 样本处理 3
6 实验室病原学诊断方法 3
6.1 免疫荧光抗体试验(FAT) 3
6.2 免疫过氧化物酶试验(IPT) 4
6.3 猪瘟病毒分离与鉴定 5
6.4 猪瘟病毒RT-nPCR检测方法 6
6.5 猪瘟病毒实时荧光RT-PCR检测方法 6
7 实验室抗体检测方法 6
7.1 猪瘟病毒中和试验 6
7.2 猪瘟病毒阻断ELISA抗体检测方法 9
7.3 猪瘟抗体间接ELISA检测方法 9
7.4 猪瘟病毒化学发光抗体检测方法 9
8 综合判定 10
附录A(规范性附录) 试剂配制 11
附录B(规范性附录) 猪瘟病毒TCID50测定 14
附录C(规范性附录) 校准品的制备 15
前言
本标准按照GB/T 1.1-2009给出的规则起草。
本标准代替GB/T 16551-2008《猪瘟诊断技术》。与GB 16551-2008相比,主要技术变化如下:
---修改了“范围”(见第1章,2008年版的第1章);
---增加了“规范性引用文件”(见第2章);
---增加了“缩略语”(见第3章);
---修改了“临床及病理学诊断”部分,并更名为“临床症状与病理变化”(见第4章,2008年版的
第2章);
---增加了“样本的采集、保存、运输和处理”部分 (见第5章);
---修改了“病原学诊断”部分,并更名为“实验室病原学诊断方法”(见第6章,2008年版的第3章);
---删除了“兔体交互免疫试验”部分(见2008年版的3.1);
---修改了“免疫酶染色试验”和“直接免疫荧光抗体试验”部分,更名为“免疫荧光抗体试验
(FAT)”和“免疫过氧化物酶试验(IPT)”(见6.1、6.2,2008年版的3.2、3.4);
---修改了“病毒分离与鉴定试验”部分,更名为“猪瘟病毒分离与鉴定”(见6.3,2008年版的3.3);
---删除了“猪瘟病毒反转录聚合酶链式反应(RT-PCR)”(见2008年版的3.5);
---增加了“猪瘟病毒RT-nPCR检测方法”和“猪瘟病毒实时荧光RT-PCR检测方法”(见6.4、6.5);
---修改了“血清学诊断”部分,并更名为“实验室抗体检测方法”(见第7章,2008年版的第4章);
---修改了“荧光抗体病毒中和试验”部分,并更名为“猪瘟病毒中和试验”(见7.1,2008年版的
4.1);
---删除了“猪瘟单抗酶联免疫吸附试验”(见2008年版的4.2);
---增加了“猪瘟病毒阻断ELISA抗体检测方法”“猪瘟抗体间接ELISA检测方法”和“猪瘟病毒
化学发光抗体检测方法”(见7.2、7.3、7.4)。
本标准由中华人民共和国农业农村部提出。
本标准由全国动物防疫标准化技术委员会(SAC/TC181)归口。
本标准起草单位:中国兽医药品监察所。
本标准主要起草人:王琴、赵启祖、徐璐、王在时、张乾义、夏应菊、范学政、邹兴启、朱元源、李翠、
丘惠深、赵耘、徐嫄。
本标准所代替标准的历次版本发布情况为:
---GB/T 16551-2008。
引 言
一种高度接触性致死性传染性疾病,可造成巨大的经济损失和社会影响。被世界动物卫生组织(OIE)
列为必须报告的疫病,我国规定CSF为一类动物疫病。
猪包括野猪是本病唯一的自然宿主,发病猪和带毒猪是本病的传染源,不同年龄、性别、品种的猪均
易感,一年四季均可发生。感染猪在发病前能通过分泌物和排泄物排毒,并持续整个病程。与感染猪直
接接触是本病传播的主要方式,病毒也可通过精液、胚胎、猪肉和泔水等方式间接传播,人、其他动物如
鼠类和昆虫、器具等均可成为重要传播媒介。
CSFV是黄病毒科(Flaviviridae)瘟病毒属(Pestivirus)的成员之一,只有1个血清型,3个基因型,
10个基因亚型,不同基因型间有很好的抗原交叉反应。近年来,由于临床上出现了CSFV持续性感染
所致的无典型临床症状和病理变化的慢性和隐性感染形式,以及多种疫病混合感染的现象,CSF的临
床诊断和病理学诊断只能作为初步诊断的依据,对CSF病原的实验室检测是确定病毒感染的主要方
法,要求诊断技术和标准更加特异和敏感。由于诊断的需求和诊断技术的发展,GB/T 16551-2008已
经不适应要求。针对CSF感染普遍存在病毒载量低、病毒血症时间短等特点,最适用于活体动物的检
测样本首先是扁桃体,其次为抗凝全血;若为病死动物,可采集扁桃体、脾脏、肾脏、胰脏、回肠、回盲瓣、
肠系膜淋巴结和颌下淋巴结等含毒量较高的脏器进行检测。采用CSFV抗原免疫检测法[免疫荧光抗
感染组织和细胞中的病毒抗原,用于确诊;如果结果可疑或者样本不足,可以通过核酸检测技术确认。
如果样本量大,可采用猪瘟病毒实时荧光RT-PCR检测方法进行初筛,阳性者采用猪瘟病毒RT-nPCR
检测方法和序列测定进行确诊和基因分型;上述都不能确诊的样本,采用经典的CSFV分离技术确诊,
分离的病毒可用于进一步研究。上述三类方法均为OIE推荐的方法。
目前,实施CSF疫苗全面免疫是我国防控CSF的重要手段,CSFV抗体检测主要用于CSF疫苗的
免疫效果评价,而对于一些不实施免疫CSF疫苗的国家和地区来说,CSF抗体检测可以作为未免疫猪
瘟疫苗猪群感染CSF的诊断依据。而在我国,ELISA方法已成为监测免疫后CSFV抗体保护水平、评
价猪群免疫效果的最主要手段,根据检测目的不同,可选择不同的方法。对于我国CSF疫苗采取的全
面免疫后而开展的大规模普查,间接ELISA抗体检测方法能够更加真实地反映中和抗体水平,为免疫
程序制定和抗体水平监测提供可靠的数据支持;阻断ELISA抗体检测方法因其特异性强,可用于引种
的种猪检测;化学发光抗体检测方法是近年来发展起来的一种新的酶联免疫检测方法,利用化学发光底
物提高检测的灵敏度,同时增加检测的线性范围。本标准中的CSFV化学发光抗体检测方法中采用了
CSFV抗体的校准品,并在检测中绘制校准曲线,可以使抗体检测结果相对定量。另外,采用该方法进
行检测,能够大大缩短检测时间,适应于田间推广使用。最终的抗体确认可采用“金标准”方法病毒中和
贸易指定试验。
本标准中涉及了5种CSF病原和4种CSFV抗体的实验室检测方法,均可用于CSF病原和抗体的
定性检测。使用者可根据自身的实验条件、能力水平以及待检样本的实际情况选择合适的方法。
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相关的专利的使用。
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请注意除上述专利外,本文件的某些内容仍可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别这些专
利的责任。
猪 瘟 诊 断 技 术
1 范围
本标准规定了猪瘟的临床症状与病理变化,样本的采集、保存、运输和处理,实验室病原学诊断方法
以及实验室抗体检测方法等。
本标准适用于猪(家猪、野猪)的猪瘟诊断。
2 规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注明日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本
文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
GB 19489 实验室 生物安全通用要求
GB/T 27540 猪瘟病毒实时荧光RT-PCR检测方法
GB/T 34729-2017 猪瘟病毒阻断ELISA抗体检测方法
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