路径: 主页 > GB/T > 第673页 > GB/T 33526-2017 | 标准编号 | GB/T 33526-2017 (GB/T33526-2017) | | 中文名称 | 转基因植物产品数字PCR检测方法 | | 英文名称 | Genetically modified organism detection method by digital PCR | | 行业 | 国家标准 (推荐) | | 中标分类 | A40 | | 国际标准分类 | 07.080 | | 字数估计 | 7,725 | | 发布日期 | 2017-02-28 | | 实施日期 | 2017-09-01 | | 引用标准 | GB/T 6682; GB/T 19495.1; GB/T 19495.3; GB/T 19495.7 | | 标准依据 | National Standard Announcement No. 4 of 2017 | | 发布机构 | 中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局、中国国家标准化管理委员会 | | 范围 | 本标准规定了转基因成分检测的数字PCR方法。本标准适用于玉米、大豆、油菜、水稻、马铃薯、苜蓿、棉花等转基因植物及其产品的转基因成分数字PCR检测。本标准所能达到的检测低限为0.1％(质量分数)。 | GB/T 33526-2017
Genetically modified organism detection method by digital PCR
ICS 07.080
A40
中华人民共和国国家标准
转基因植物产品数字PCR检测方法
2017-02-28发布
2017-09-01实施
中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局
中国国家标准化管理委员会发布
前言
本标准按照GB/T 1.1-2009给出的规则起草。
本标准由全国生化检测标准化技术委员会(SAC/TC387)提出并归口。
本标准主要起草单位:中国检验检疫科学研究院、广西出入境检验检疫局检验检疫技术中心、中国
农业大学、中国农业科学院油菜作物研究所。
本标准主要起草人:付伟、杜智欣、王勤、王慧煜、许文涛、吴刚、朱水芳、刘晓飞。
转基因植物产品数字PCR检测方法
1 范围
本标准规定了转基因成分检测的数字PCR方法。
本标准适用于玉米、大豆、油菜、水稻、马铃薯、苜蓿、棉花等转基因植物及其产品的转基因成分数字
PCR检测。
本标准所能达到的检测低限为0.1%(质量分数)。
2 规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文
件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法
GB/T 19495.1 转基因产品检测 通用要求和定义
GB/T 19495.3 转基因产品检测 核酸提取纯化方法
GB/T 19495.7 转基因产品检测 抽样和制样方法
3 术语和定义
下列术语和定义适用于本文件。
3.1
18srRNA基因 18srRNAgene
转录自18srDNA,是细胞核糖体的组分之一。
3.2
CaMV35s启动子基因 CaMV35spromotor
3.3
NOS终止子基因 NOSterminitor
来自胭脂碱合成酶基因NOS的终止子。
4 原理
数字PCR其技术原理是通过将原始PCR反应体系进行分割,进而对所有小的反应体系进行扩增
并后续检测。通过对反应体系进行有限的分割,从而使整个反应体系可以更加耐受核酸抑制因子,并且
更加稳定、准确、快速地对痕量的转基因成分进行精准鉴定。
现阶段数字PCR的实现形式包括芯片式数字PCR与微滴式数字PCR两种。其中芯片式数字
PCR通过微流控芯片实现对原始反应体系的分割,这种分割方式具有稳定性好、均一性好的优点,但是
这种分割方式的实验成本相对较高;微滴式数字PCR平台通过产生微小油包水体系实现反应体系的分
割。这种分割方式具有反应速度快,分割成本低的优点,但是相对来说,这种分割方法的稳定性较差,而
且对于数据分析的要求也相对较高。由于数字PCR的平台差异,对不同数字PCR平台进行的数据协
同分析也成为了目前数字PCR检测方法发展的关键。
本标准针对通用筛选元件CaMV35s启动子和NOS终止子设计选取特异性引物和探针进行数字
PCR扩增,并根据扩增结果来判定CaMV35s启动子和NOS终止子的外源筛选元件成分。另外,通过
芯片式数字PCR和微滴式数字PCR的协同比对,本标准方法可以在两种平台中达到同样的检测目的。
5 试剂与材料
除非有特殊说明,仅使用分析纯试剂和符合GB/T 6682规定的一级水。
5.1 DNA提取试剂盒
推荐针对不同的样品基质类型选取不同的基因组提取试剂盒。
5.2 数字PCR反应试剂盒
推荐按照不同的数字PCR平台的说明书选取其推荐的数字PCR反应试剂盒。
5.3 18srRNA基因引物和探针
18s-F:5'-CCTGAGAAACGGCTACCAT-3'
18s-R:5'-CGTGTCAGGATTGGGTAAT-3'
5.4 CaMV35s启动子基因引物和探针
5.5 NOS终止子基因引物和探针
TNOS-F:5'-ATCGTTCAAACATTTGGCA-3'
6 仪器与设备
6.1 分析天平:感量0.1mg。
6.2 生物安全柜。
6.3 数字PCR扩增仪。
6.4 纯水仪。
6.5 核酸定量仪。
6.6 涡旋震荡仪。
6.7 其他相关仪器和设备。
6.8 离心管。
6.9 不同量程移液器以及配套吸头如下:
a) 量程为20μL~200μL,10μL~100μL和2μL~20μL的移液器以及配套的200μL吸头;
b) 量程为0.5μL~10μL和0.1μL~2.5μL的移液器以及配套的10μL吸头。
7 操作步骤
7.1 抽样
按照GB/T 19495.1和GB/T 19495.7的规定执行。
7.2 制样
按照GB/T 19495.1和GB/T 19495.7的规定执行。
7.3 试样预处理
按照GB/T 19495.1和GB/T 19495.3的规定执行。
7.4 DNA模板制备
按照GB/T 19495.1和GB/T 19495.3的规定执行。
7.5 数字PCR扩增方法
7.5.1 试样数字PCR反应
7.5.1.1 内标准基因数字PCR反应
每个试样内标准基因数字PCR反应设置3个平行。并按照表1的组分和终浓度配置数字PCR反
应体系。反应体系配置完成后,进行反应体系的分割,其中芯片法数字PCR通过微流控芯片实现本步
骤,微滴法数字PCR通过形成油包水结构实现体系的分割。该步骤按照不同数字PCR平台的说明书
进行操作。数字PCR反应的有效分割体系数不得低于理论分割体系数的60%。
表1 数字PCR反应体系
试剂 终浓度 体系
2×反应 Mixa 1× 2μL
20μmol/LzSSIIb-F/p35s-F/T NOS-F 0.45μmol/L 0.09μL
20μmol/LzSSIIb-R/p35s-R/T NOS-R 0.45μmol/L 0.09μL
20μmol/LzSSIIb-P/p35s-P/T NOS-P 0.1μmol/L 0.02μL
50ng/μLDNA模板 12.5ng/μL 1μL
水 补齐4μL
总体系 4μL
a 推荐市面上现售的数字PCR平台进行实验,并针对市面上现售的不同数字PCR平台,依据说明书调整反应体
系的组分和最终体积,并保证表中所列组分的终浓度不变。
体系分割完成后,进行数字PCR反应。荧光分析步骤采用 VIC单荧光通道,反应程序如表2
所示。
表2 数字PCR反应程序
步骤 温度 持续时间 循环数
热激活
50℃ 2min
95℃ 5min
变性 95℃ 15s
退火延伸 60℃ 1min
注:不同PCR反应平台可以根据说明书对热启动步骤程序进行修改,但是不能对扩增程序进行修改。
7.5.1.2 外源基因p-35s与T-NOS基因数字PCR反应
每个试样外源基因数字PCR反应设置3个平行。外源基因扩增所用反应体系与反应程序与7.5.1.1
相同,扩增所使用的引物探针为5.4与5.5所述引物探针。
7.5.2 对照数字PCR反应
在试样数字PCR的同时,应设置阴性对照与空白对照。
以与试样相同种类的非转基因植物基因组DNA作为阴性对照;以水作为空白对照。
各对照PCR反应体系中,除模板外,其余组分及PCR反应条件与7.5.1相同。
8 结果分析与表述
8.1 阈值的设定
根据数字PCR结果中扩增曲线的基线或者体系中阴性分割体系的终点荧光值设定荧光的阈值限。
阈值限需要对阴性和阳性扩增结果进行明显的区分。
8.2 对照组检测结果分析
阴性对照组只有内标准基因的扩增,空白对照组没有任何扩增现象,这表明数字PCR反应体系正
常工作,否则需要进行重新检测。
8.3 试样检测结果分析和表述
8.3.1 内标准基因得到了明显的扩增,并且外源p-35s或NOS基因的任何一个出现明显的扩增现象,
阳性扩增体系内扩增曲线形状良好或者其终点荧光信号值超过荧光阈值,这表明试样中检测出了p-35s
或T-NOS基因,表述为“试样中检测出了p-35s或NOS基因成分,检测结果为阳性”。
8.3.2 内标准基因得到了明显的扩增,且其扩增曲线形状良好并超过......
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