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GB 23200.69-2016 相关标准英文版PDF

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GB 23200.69-2016 英文版 299 GB 23200.69-2016 [PDF]天数 <=3 食品安全国家标准 食品中二硝基苯胺类农药残留量的测定液相色谱-质谱/质谱法 GB 23200.69-2016 有效
基本信息
标准编号 GB 23200.69-2016 (GB23200.69-2016)
中文名称 食品安全国家标准 食品中二硝基苯胺类农药残留量的测定液相色谱-质谱/质谱法
英文名称 Food safety national standard -- Determination of Dinitroaniline Pesticide Residues in Food by Liquid Chromatography -- Mass Spectrometry / Mass Spectrometry
行业 国家标准
中标分类 G25
字数估计 15,138
发布日期 2016-12-18
实施日期 2017-06-18
旧标准 (被替代) SN/T 2795-2011
标准依据 State Health Commission, Ministry of Agriculture, Food and Drug Administration Notice No. 16 of 2016
发布机构 中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会、国家食品药品监督管理总局

GB 23200.69-2016: 食品安全国家标准 食品中二硝基苯胺类农药残留量的测定液相色谱-质谱/质谱法 GB 23200.69-2016 英文名称: Food safety national standard -- Determination of Dinitroaniline Pesticide Residues in Food by Liquid Chromatography -- Mass Spectrometry / Mass Spectrometry 中华人民共和国国家标准 GB 代替SN/T 2795-2011 食品安全国家标准 食品中二硝基苯胺类农药残留量的测定 液相色谱-质谱/质谱法 1 范围 本标准规定了食品中 8 种二硝基苯胺类农药残留量的液相色谱-质谱/质谱法检测方法。 本标准适用于黄豆、大米、菠菜、生姜、苹果、西瓜、甘蓝、节瓜、茶叶、鸡蛋、猪肉和鸡肝中氟 乐灵、二甲戊灵、氨磺乐灵、仲丁灵、氨氟乐灵、氨氟灵、甲磺乐灵和异丙乐灵等二硝基苯胺类农药残 留量的测定和确证;其它食品可参照执行。 2 规范性引用文件 文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文件。 凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。 GB 2763 食品安全国家标准 食品中农药最大残留限量 GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法 3 原理 试样用乙腈振荡提取,石墨化碳黑固相萃取柱和HLB固相萃取柱净化,液相色谱-串联质谱法仪测 定和确证,外标法定量。 4 试剂和材料 除另有规定外,所有试剂均为分析纯,水为符合GB/T 6682中规定的一级水。 4.1 试剂 4.1.1 甲醇(CH3OH):色谱纯。 4.1.2 乙腈(CH3CN):色谱纯。 4.1.3 正己烷(C6H14):色谱纯。 4.1.4 甲酸(CH2O2):色谱纯。 4.1.5 丙酮(C3H6O):优级纯。 4.1.6 氯化钠(Nacl):分析纯。 4.1.7 无水硫酸钠(Na2SO4):分析纯,用前经 650 ℃灼烧 4 h,置干燥器中备用。 4.2 溶液配制 4.2.1 乙腈-水溶液(1+1,含 0.05%甲酸):量取 500 mL 乙腈与 0.5 mL 甲酸于 1 L 容量瓶中, 用水定容至 1 L,混匀。 4.2.2 正己烷-丙酮溶液(2+8):取 20 mL 正己烷,加入 80 mL 丙酮,混匀。 4.3 标准品 4.3.1 二硝基苯胺类农药标准物质:参见附录 A 中表 A.1。 4.4 标准溶液配制 4.4.1 二硝基苯胺类农药标准储备溶液:分别准确称取适量的二硝基苯胺类农药标准物质,用丙酮配 制成浓度为 1000 mg/L 的标准储备溶液,标准溶液避光于-18℃保存,保存期为 12 个月。 4.4.2 二硝基苯胺类农药混合中间标准溶液:吸取适量的各标准储备溶液,用甲醇稀释成氟乐灵浓度 为 5.0mg/L,其它 7 种药物浓度为 1.0 mg/L 的混合中间标准溶液,0℃~4℃避光保存,保存期为 3 个月。 4.4.3 基质混合标准工作溶液:吸取适量的混合中间标准溶液,用空白样品提取液配成氟乐灵浓度为 0μg/L、50.0 μg/L、100 μg/L、250μg/L、500 μg/L 和 1000 μg/L ,其它 7 种农药浓度为 0μg/L、10.0 μg/L、 20.0 μg/L、50.0 μg/L、100 μg/L 和 200 μg/L 的基质混合标准工作溶液。当天配制。 4.5 材料 4.5.1 石墨化碳黑固相萃取柱:3 mL 250 mg,或相当者。用前 3 mL 正己烷-丙酮溶液活化,保持柱体湿润。 4.5.2 Oasis HLB1,6mL,200mg,或相当者。使用前用 5 mL 乙腈活化,保持柱体湿润。 5 仪器和设备 5.1 液相色谱-质谱/质谱仪:配有电喷雾离子源(ESI)。 5.2 分析天平:感量 0.01 g 和 0.0001 g。 5.3 粉碎机。 5.4 组织捣碎机。 5.5 涡旋混匀器。 5.6 固相萃取装置,带真空泵。 5.7 氮吹浓缩仪。 5.8 离心机:转速不低于 5 000 r/min。 6 试样制备与保存 6.1 试样制备 6.1.1 黄豆、茶叶和大米 取代表性样品约500 g,(不可用水洗)切碎后,用捣碎机将样品加工成浆状,混匀。试样均分为 二份,装入洁净容器,密封,并标明标记。 6.1.2 蔬菜、水果、鸡蛋、猪肉及鸡肝 取代表性样品约500 g,(不可用水洗)切碎后,用捣碎机将样品加工成浆状,混匀。试样均分为 二份,装入洁净容器,密封,并标明标记。 注:以上样品取样部位按GB 2763附录A执行。 6.2 试样保存 在制样的操作过程中,应防止样品受到污染或发生残留物含量的变化。黄豆、茶叶和大米试样于常 温下保存。蔬菜、水果、鸡蛋、猪肉及鸡肝试样于-18 C以下冷冻存放。 7 分析步骤 7.1 提取 7.1.1 黄豆、大米、茶叶、鸡蛋、猪肉及鸡肝 对于茶叶、大豆、板栗、玉米样品,称取2.5 g试样(精确至0.01 g)。对于菠菜、蘑菇、苹果、牛 肉、牛肝、鸡肉、鱼肉、牛奶样品,称取5 g试样(精确至0.01 g)。将称取的试样置于50 mL离心管中, 加入6 mL饱和氯化钠水溶液,于涡旋混匀器上混匀30 s,放置15 min。加入6 mL丙酮-正己烷溶液,在 混匀器上混匀2 min。5 000 r/min离心1 min,吸取上层提取液于另一试管中。再分别加入4 mL丙酮-正己 烷溶液重复提取两次,合并提取液,在45 ℃下氮气流吹至约1 mL待净化。 7.1.2 蔬菜、水果 称取约5g(精确至0.01 g)样品于50 mL具塞离心管中,然后加入2 g 氯化钠,再加入15 mL乙腈高 速均质提取3 min,于5 000 r/min离心5 min,将乙腈层转移至25 mL容量瓶中。残渣再用10 mL乙腈重复 提取一次,合并提取液,并用乙腈定容至25 mL。 7.2 净化 7.2.1 黄豆、大米、猪肉 吸取全部浓缩提取液于 Supelclean C18固相萃取柱中,以约 1.5 mL/min 的流速使样液全部通过固相 萃取柱,再用 5 mL 乙腈淋洗并抽干固相萃取柱,收集全部流出液于 1.5 mL 离心管中,40 ℃以下用氮 气吹至近干,残渣用乙腈+水溶液定容至 1.0 mL。旋涡混匀后,过微孔滤膜,供液相色谱-质谱/质谱仪测定。 7.2.2 蔬菜、水果 精确吸取 5 mL 提取液 5.0 mL 于 15 mL 离心管中,40 ℃以下用氮气吹至近干,用 2.0 mL 正己烷- 丙酮溶液溶解,转入 Envi-carb 固相萃取柱中,以约 1.5 mL/min 的流速使样液全部通过固相萃取柱,再 非商业性声明:此处列出色谱柱型号仅是为了提供参考,不涉及商业目的,鼓励标准使用者 尝试采用不同厂家或规格的色谱柱。 用 3 mL 正己烷-丙酮溶液淋洗并抽干固相萃取柱,收集全部流出液于 15 mL 离心管中,40 ℃以下用氮 气吹至近干,残渣用乙腈+水溶液定容至 1.0 mL。旋涡混匀后,过微孔滤膜供液相色谱-质谱/质谱仪测定。 7.2.3 茶叶、鸡蛋及鸡肝 吸取茶叶、鸡蛋及鸡肝浓缩提取液于 Oasis HLB 固相萃取柱中,以约 1.5 mL/min 的流速使样液全 部通过固相萃取柱,再用 5 mL 乙腈淋洗并抽干固相萃取柱,收集全部流出液于 15 mL 离心管中,40 ℃ 以下用氮气吹至近干,用 2.0 mL 正己烷-丙酮溶液溶解,转入 Envi-carb 固相萃取柱中,以约 1.5 mL/min 的流速使样液全部通过固相萃取柱,再用 3 mL 正己烷-丙酮溶液淋洗并抽干固相萃取柱,收集全部流出 液于 15 mL 离心管中,40 ℃以下用氮气吹至近干,残渣用乙腈+水溶液定容至 1.0 mL。旋涡混匀后, 过微孔滤膜,供液相色谱-质谱/质谱仪测定。 7.3 测定 7.3.1 液相色谱参考条件 a) 色谱柱:C18色谱柱,50 mm×2.1 mm (i.d.),1.7 d.,或相当者; b) 柱温:40 ℃; c) 进样量:10 µL; d) 流动相、流速及梯度洗脱条件见表1。 7.3.3 定性测定 每种被测组分选择1个母离子,2个以上子离子,在相同实验条件下,样品中待测物质的保留时间, 与基质标准溶液的保留时间偏差在±2.5%之内;且样品中各组分定性离子的相对丰度与浓度接近的基质 混合标准工作溶液中对应的定性离子的相对丰度进行比较,偏差不超过表2规定的范围,则可判定为样 品中存在对应的待测物。 7.3.4 定量测定 仪器最佳工作条件下,对基质混合标准工作溶液进样,以峰面积为纵坐标,基质混合标准工作溶液 浓度为横坐标绘制标准工作曲线,用标准工作曲线对样品进行定量。样品溶液中待测物的响应值均应在 测定方法的线性范围内,如果超出线性响应范围,应用空白基质溶液进行适当稀释。在上述液相色谱- 质谱条件下,二硝基苯胺类农药的保留时间分别为:氨磺乐灵(3.21 min)、甲磺乐灵(3.41 min)、 氨氟灵(4.06 min)、氨氟乐灵(5.20 min)、二甲戊灵(5.36 min)、仲丁灵(5.70 ......

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