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GB/T 17999.10-2008 相关标准英文版PDF
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GB/T 17999.10-2008
英文版
189
GB/T 17999.10-2008
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SPF鸡 微生物学监测 第10部分:SPF鸡 间接免疫荧光试验
GB/T 17999.10-2008
有效
基本信息
标准编号
GB/T 17999.10-2008 (GB/T17999.10-2008)
中文名称
SPF鸡 微生物学监测 第10部分:SPF鸡 间接免疫荧光试验
英文名称
SPF chicken -- Microbiological surveillance -- Part 10: Indirect immunofluorescent assay for SPF chicken
行业
国家标准 (推荐)
中标分类
B41
国际标准分类
11.220
字数估计
8,864
发布日期
2008-12-31
实施日期
2009-05-01
旧标准 (被替代)
GB/T 17999.9-1999
标准依据
国家标准批准发布公告2008年第27号(总第140号)
发布机构
中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局、中国国家标准化管理委员会
范围
GB/T 17999的本部分规定了间接免疫荧光试验的技术要求等。本部分适用于对SPF鸡进行鸡传染性贫血病毒(Chicken Infectious Anaemia Virus, CIAV)抗体的检测。
GB/T 17999.10-2008 ICS 11.220 B41 中华人民共和国国家标准 GB/T 17999.10-2008 代替GB/T 17999.9-1999 SPF鸡 微生物学监测 第10部分:SPF鸡 间接免疫荧光试验 2008-12-31发布 2009-05-01实施 中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局 中国国家标准化管理委员会发布 前言 GB/T 17999《SPF鸡 微生物学监测》分为10个部分: ---第1部分:SPF鸡 微生物学监测总则; ---第2部分:SPF鸡 红细胞凝集抑制试验; ---第3部分:SPF鸡 血清中和试验; ---第4部分:SPF鸡 血清平板凝集试验; ---第5部分:SPF鸡 琼脂扩散试验; ---第6部分:SPF鸡 酶联免疫吸附试验; ---第7部分:SPF鸡 胚敏感试验; ---第8部分:SPF鸡 鸡白痢沙门氏菌检验; ---第9部分:SPF鸡 试管凝集试验; ---第10部分:SPF鸡 间接免疫荧光试验。 本部分为GB/T 17999的第10部分。 本部分代替GB/T 17999.9-1999《SPF鸡 间接免疫荧光试验》。 本部分与GB/T 17999.9-1999相比主要变化如下: ---增加了规范性附录A“试剂的配制”和资料性附录B“细胞计数方法”; ---详细界定了试验成立条件和待检样品的判定标准。 本部分的附录A为规范性附录,附录B为资料性附录。 本部分由中华人民共和国农业部提出。 本部分由全国动物防疫标准化技术委员会(SAC/TC181)归口。 本部分起草单位:中国农业科学院哈尔滨兽医研究所、中国动物卫生与流行病学中心、济南斯帕法 斯家禽有限公司。 本部分主要起草人:曲连东、刘家森、韩凌霞、邵卫星、朱果、单忠芳、姜骞、司昌德、于海波、孟庆文。 本部分所代替标准的历次版本发布情况为: ---GB/T 17999.9-1999。 GB/T 17999.10-2008 SPF鸡 微生物学监测 第10部分:SPF鸡 间接免疫荧光试验 1 范围 GB/T 17999的本部分规定了间接免疫荧光试验的技术要求等。 本部分适用于对SPF鸡进行鸡传染性贫血病毒(ChickenInfectiousAnaemiaVirus,CIAV)抗体的 检测。 2 原理 间接免疫荧光试验,以病毒感染细胞作抗原,与待检血清中的特异抗体结合,再与荧光色素标记的 抗抗体结合,形成抗原-抗体-抗抗体复合物。荧光色素在紫外光或蓝紫光的作用下,激发出可见的荧 光,因此出现荧光就说明标记物的存在,同时也反映了特异性抗体的存在。常采用已知抗原及荧光色素 标记的抗抗体检测相应的抗体。 3 试剂和器材 3.1 试剂 3.1.1 CIAV病毒DELROSE株。 3.1.2 阴性、阳性血清。 3.1.3 被检血清。 3.1.4 磷酸盐缓冲液(PBS)(见附录A)。 3.1.5 异硫氰荧光素(FITC)标记抗鸡IgG(按说明稀释使用)。 3.1.6 缓冲甘油或封片剂(见附录A)。 3.1.7 丙酮。 3.2 器材 3.2.1 抗原片。 3.2.2 湿盒。 3.2.3 37℃培养箱。 3.2.4 荧光显微镜。 4 操作程序 4.1 感染细胞的制备 用含15%新生牛血清的DMEM 培养基在39℃和5%二氧化碳环境中培养 MDCC-MSB1细胞。 细胞长至每毫升5×106 个时(细胞计数参见附录B),接种CIAV,并换成含5%新生牛血清的DMEM 培养基,继续培养36h~48h。 4.2 抗原片的制备 4.2.1 细胞病变(细胞体积增大2倍~3倍)约达50%~75%时,收集细胞培养物,以1500r/min离心 10min,弃上清液,用PBS洗涤细胞沉淀物3次,并细胞计数,用PBS重悬细胞浓度。 4.2.2 取10μL细胞悬液(约含细胞10 5 个......
英文网页English:
GB/T 17999.10-2008
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